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FV3000

FV3000

 

The FLUOVIEW FV3000 series is designed to meet some of the most difficult challenges in modern science. Featuring the high sensitivity and speed required for live cell and tissue imaging, the FV3000 enables 2D-6D (x,y,z,t,λ,p) macro to micro imaging of cells, tissues, and small organisms. With an intuitive and adaptable user interface, the FV3000 supports complete workflows from image acquisition to processing and analysis. Particular attention has been paid to the needs of cell biology, cancer research, and stem cell research, and with two new upright configurations, the FV3000 is also poised to meet the needs of neuroscience, electrophysiology, and developmental biology.

High Sensitivity Multi-Channel Imaging

A Fully Spectral System with Sensitivity and Accuracy

The FV3000 series employs Olympus’ TruSpectral detection technology. Based on patented* Volume Phase Hologram (VPH) transmission and an adjustable slit to control light, the spectral detection is highly efficient, enabling users to select the detection wavelength of each individual channel to 2 nm.

Efficient TruSpectral Detection System

The FV3000 is a fully spectral series of confocal microscope. TruSpectral detection delivers improved overall transmission and sensitivity. The high signal-to-noise ratio results in excellent multi-color confocal imaging capabilities.

Enhanced Quantum Efficiency

The GaAsP Photomultiplier Tubes (PMTs) in the FV3000’s high sensitivity detector (HSD) enable users to view samples whose emission is too weak to view with conventional detection methods. The GaAsP PMT unit incorporates two channels with a maximum quantum efficiency of 45%, and Peltier cooling that reduces background noise by 20% for high S/N ratio images under very low excitation light.

Multichannel TruSpectral Detection with Sixteen-Channel Unmixing

TruSpectral technology’s efficient design and software enable spectral detectors to run in multichannel mode for both live and post-processing spectral unmixing with a multichannel lambda mode. The multichannel mode facilitates constant spectral unmixing during live cell experiments, separating complex fluorescence during acquisition. With up to four different dynamic ranges from the four different channels of array, bright and dim spectral signals can be separated by independently adjusting the sensitivity of each detector.

Spectral Unmixing

The deconvolution algorithm enables overlapping spectra to be separated based on the spectral information from lambda stack images. The fluorescence cross-talk between the channels can be eliminated by the unmixing algorithm during both image acquisition and post acquisition processing.

 

Live Spectral Unmixing with TruSpectral Detection and Real-Time Processing

The power of TruSpectral detection plus multichannel mode means live spectral unmixing can be performed during image acquisition. Complex, overlapping spectra can be processed in real time.

Live image before unmixing of CFP (endosomes, blue), mAmetrine (plasma membrane, green), mKO (nucleus, orange) and mKeima (F-actin, purple) during time-lapse imaging.
Image data courtesy of Dr. Kazuhiro Aoki, Dr. Michiyuki Matsuda, Graduate School of Medicine, Kyoto Uni

 

Live blind unmixed image.
Image data courtesy of Dr. Kazuhiro Aoki, Dr. Michiyuki Matsuda, Graduate School of Medicine, Kyoto Un

Live 3D Rendering

See your data unfold in real time with the live 3D image display function of the FV3000 software. 3D images can be constructed during image acquisition and shown as live images.

Fucci induced Spheroid of HT29 cell line
Yuji Mishima, Ph.D., Kiyohiko Hatake M.D., Ph.D. Clinical Chemotherapy, Cancer Chemotherapy Center, Japanese Foundation for Cancer Research.

Macro to Micro Imaging and Super Resolution

Macro to Micro Observation

Finding areas of interest in samples can be challenging. The confocal optical design of the FV3000 series supports macro to micro imaging from 1.25X up to 150X, so users can quickly switch from low magnification overview observation to high-magnification, detailed observation of regions of interest. Users can employ image stitching at both macro and micro levels to generate overview images that show samples in context.

A stitched image of a coronal section (30 μm thickness) from an adult YFP-H mouse cerebrum acquired with 20X objective (UPLSAPO20X).
Image data courtesy of Takako Kogure and Atsushi Miyawaki, Cell Function Dynamics, Brain Science Institute of RIKEN.

Powerful One-Click Macro Analysis with cellSens

Images alone are not enough; with integrated cellSens Count and Measure analysis, the FV3000 Series can optimize images with deconvolution and analyze them with one-click macro functionality for a broad range of morphological measurements.

A spheroid image of a NMuMG cell line expressing Fucci2. Image data courtesy of Atsushi Miyawaki, Cell Function Dynamics, Brain Science Institute of RIKEN.

Olympus’ widely applicable super resolution method requires no special fluorophores and works for a wide range of samples. Ideal for colocalization analysis, the Olympus Super Resolution imaging module can acquire four fluorescent signals either sequentially or simultaneously with a resolution of approximately 120 nm*, nearly doubling the resolution of typical confocal microscopy. The imaging module is easy to use with minimal user training and can be added to any confocal system, making it a truly accessible method for achieving super resolution.
* Subject to objective magnification, numerical aperture, excitation and emission wavelength, and experiment conditions.

Secondary antibody labels against GFP (Alexa Fluor 488, neurons) and SV2 (Alexa Fluor 565, red). Sample courtesy of Dr. Ed Boyden and Dr. Fei Chen, MIT.

0.5 AU Confocal Image
0.5 AU Confocal Image Deconvolved with cellSens Advanced Deconvolution
Olympus Super Resolution Plus cellSens Advanced Deconvolution. Note clear separation of punctate stains with OSR.

Deconvolution

The optional constrained iterative deconvolution function improves the resolution, contrast, and dynamic ranges of confocal images obtained by the FV3000. The deconvolution function can be combined with Olympus Super Resolution (FV-OSR) to improve the z-axis resolution of the deconvolved images.

 

(Left) Original Image, (Right) Deconvolved Image

Cell line: HeLa (human cervical cancer cell line) Immunostaining: Hec1 staining (green, Alexa Fluor 488), α-tubulin staining (red, Alexa Fluor 568),DAPI staining (blue) Mitotic spindle and kinetochores are stained with anti-α-tubulin (red) and anti-Hec1 (green) antibodies, respectively. Chromosomes interact with microtubules of the mitotic spindle via kinetochores (protein structures assembled on the centromere region of chromosomes.) Image data courtesy of Masanori Ikeda and Kozo Tanaka, Department of Molecular Oncology, Institute of Development, Aging and Cancer, Tohoku University.

COS7 cells, triple staining, DAPI (cyan), Actin Bodipy-FL(green), Tubulin AF568 (red) Image data courtesy of J. Doehner and U. Ziegler, Center for Image Analysis and Microscopy, University of Zurich

Image Analysis

The FV3000 incorporates various optional analysis functions to complete the workflow from image acquisition through data analysis. The Count and Measure solution enables the measurement of the number, size, luminosity, and morphology of the segments. Colocalization enables the analysis of overlapping fluorescent spectra.

 

Increase Productivity with High Speed Imaging

 

Galvanometer and Hybrid Galvo/Resonant Scanner

Users have their choice of two different types of scan units: galvanometer only with the FV3000 or hybrid galvanometer/resonant with the FV3000RS. The hybrid scan unit has a galvanometer scanner for high-precision scanning, as well as a resonant scanner that is ideal for high-speed imaging. With the galvanometer scanner and Olympus super resolution technology (FV-OSR), users can obtain resolutions down to 120nm with a high signal-to-noise ratio. The galvanometer scanner also features flexible scanning options, including precise tornado scanning as well as multipoint stimulation with 100ms switching time. The galvanometer scanner can image up to 16 frames per second. By switching to the resonant scanner, users can capture 30 frames per second with a full field of view at 512 x 512 pixels. By clipping down to 512 x 32 pixels, the resonant scanner can capture up to 438 frames per second to capture critical live physiological events such as calcium ion flux.

No Compromise between Speed and Field of View

Many high-speed scanning methods restrict the field of view, limiting their usefulness for examining large areas with multiple cells. The FV3000 series’ resonant scanner maintains a full 1X field of view, even at a video rate of 30 frames per second. B clipping the Y axis, additional speeds up to 438 frames per second can be achieved.

Most resonant scanners force a trade-off between speed and field of view. FLUOVIEW systems are optimized to maintain the field of view with even signal intensity so dynamic samples (e.g. calcium imaging) can be seen in the broad context of their cells and tissues.
The image above shows examples of the clipped fields of view required in other resonant scanning systems.

 

https://static2.olympus-lifescience.com/data/Video/Library/511707659_fv3000_Bloodflow_480.mp4?rev=419A

Platelets bound to a thrombosis in the blood vessel of a mouse. Images taken at 30 fps in full frame by resonant scanner with 2 CH GaAsP PMTs.

Image data courtesy of Dr. Takuya Hiratsuka, Dr. Michiyuki Matsuda, Graduate School of Biostudies, Kyoto University.

A431 cells fixed with methanol labeled with Abcam Anti-ERK1 + ERK2 antibody (Alexa Fluor 488) ab208564 and Anti-alpha Tubulin antibody (Alexa Fluor 594) ab195889 and DAPI. Sample courtesy of Abcam.

Optimized for Live Cell Imaging

Resonant scanning greatly reduces photobleaching and phototoxicity compared to standard galvanometer scans by preventing the excitation of fluorophores into triplet states that create reactive oxygen species. These features make live cell experiments more robust and reliable. The FV3000 series has complete laser intensity control from low to high range, enabling the system to use the minimum required amount of laser power on samples. The optional laser power monitor provides consistent laser power during long-term time-lapse imaging across multiple days.

Ratio Imaging and Intensity Modulated Display (IMD)

The FV3000’s ratio imaging analysis function includes an Intensity Modulated Display (IMD) function in the software that displays quantitative fluorescence ratio changes during both standard and high-speed acquisitions. This function is particularly useful for calcium and FRET imaging where a pure ratio display provides poor contrast in background areas.


sGFP1-mito reveals heterogeneity in mitochondrial thermogenesis in HeLa cells. The images of ratio (ex 405 nm/ex 488 nm) in tsGFP1-mito-expressing cells before and after CCCP treatment at 37 °C. Scale bars indicate 10 μm (whole image) and 3 μm (inset). Image data courtesy of Shigeki Kiyonaka Ph,D, Yasuo Mori Ph,D Molecular Biology Field, Department of Synthetic Chemistry and Biological Chemistry, Kyoto University.
(Left) CFP, (Right) YFP FRET
(Left) Raw CFP/YFP ratio, (Right) IMD of CFP/YFP ratio

Cardiomyoctye Image data courtesy of Yusuke Niino and Atsushi Miyawaki, Cell Function Dynamics, Brain Science Institute of RIKEN.

Rolling Average Processing

High-speed scanning at low laser power to avoid phototoxicity often decreases the signal-to-noise ratio. With rolling average post-processing, users have the flexibility to adjust high-speed time-lapse images while maintaining the time scale and keeping the original data.

(Left) Raw 30 fps data acquired at low laser power (0.05%, 488 nm). (Right) Rolling average processing (10 frame) on 30 fps data acquired at low laser power.

Object Tracking

In time-lapse imaging, moving objects can be automatically detected, tracked, and analyzed. cellSens software’s tracking function provides a powerful and intuitive tool to quantify dynamic processes such as cell movement and division.

Bioluminescence of RA-induced differentiating cells at day 12 from Bmal1:luc stably transfected ES cells
Image data courtesy of: Kazuhiro Yagita, M.D. Ph.D. Department of Physiology and Systems Bioscience, Kyoto Prefectural University of Medicine
Reference: Proc Natl Acad Sci U S A. 107(8): 3846–3851(2010)

https://static1.olympus-lifescience.com/data/Video/Library/cellSens_tracking-web2_406.mp4?rev=3464

Accurate Time-lapse Imaging

Maintain Focus with Z-Drift Compensation (ZDC) System

The IX3-ZDC2 Z-drift compensator uses minimally-phototoxic infrared light (laser class 1) to identify the location of the sample plane. One-shot autofocus (AF) mode enables several focus positions to be set as desired for deeper samples, enabling efficient Z-stack acquisitions in multiposition experiments. The continuous AF mode keeps the desired plane of observation precisely in focus, avoiding focus drift due to temperature changes or the addition of reagents, making it ideal for measurements that require more stringent focusing. Furthermore, the increased optical offset enables continuous AF with plastic vessels or with dry objectives. The Z-drift compensator is also compatible with silicone objectives (in AF mode).

Stage Control for Multi-Area Time-lapse, Microplate, and Stitching

Multi-area time-lapse and stitching provide robust and accurate time-lapse data, and enable users to generate detailed overview images to see their data in context. The well navigator function provides sophisticated, intuitive controls for a wide range of cell culture vessels and custom plates.

Stable Time-Lapse Imaging with the IX83 Microscope

A Z-drive guide installed near the revolving nosepiece combines high thermal rigidity with the stability of a wraparound structure to significantly reduce the impact of heat and vibration and improve the quality of time-lapse imaging.

Hard Disk Recording

The microscope comes equipped with a hard-disk drive (HDD) recording function. The images are stored automatically in the HDD. Large volumes of data, such as those obtained from long-term time-lapse imaging, can be easily collected.

High Contrast under Bright Conditions

The umbra unit is designed specifically for fluorescence observation under bright room conditions. It efficiently blocks out room light, enhances the contrast of fluorescence, and enables clear fluorescence observation without the need for a dark room.

Reduce Complexity with the Sequence Manager

With the Sequence Manager software module, complex protocols are handled with ease and accurate timing. Multi-day time-lapse experiments are controlled with microsecond scan accuracy and millisecond sequence execution accuracy. Various protocols, such as time-lapse with different time intervals, switching between high and low magnification, and photo-stimulation between imaging by FRAP or FRET (acceptor photobleaching), can be performed.

Life Science Analysis

The cellSens Life Science Analysis module enables analysis of images from FRAP or FRET experiments. In FRAP, τ/2 and the Mobile/ Immobile fraction can be estimated by fitting the curve of luminosity change caused by fluorescence recovery after bleaching. FRET enables the measurement of FRET efficiency by acceptor photobleaching, ratio imaging, and sensitized emission.

Superior Objectives

Silicone Immersion Objectives for Live Cell Imaging Deliver High-Resolution Observation at Depth

Olympus offers four high NA silicone immersion objectives that deliver excellent performance for live cell imaging. The refractive index of silicone oil (ne≈1.40) is close to that of living tissue (ne≈1.38), enabling high-resolution observations deep inside living tissue with minimal spherical aberration caused by refractive index mismatch. Silicone oil does not dry out or harden, so there is never a need to refill oil, making it ideal for extended time-lapse observations.

Water immersion objective (Left), Silicone immersion objective (Right)

In deep tissue observation, image quality depends on keeping the refractive index of the sample and immersion medium as close to each other as possible. When working with a silicone immersion objective, the difference between the refractive index of the samples and silicone oil is minimal, thus enabling brighter fluorescence images with higher resolution for deep tissue observation.

UPLSAPO30XS: For a broader view and greater depth
Magnification: 30X, NA: 1.05 (silicone oil immersion), W.D.: 0.8 mm,
cover glass thickness: 0.13 – 0.19 mm, operating temperature: 23 – 37 °C

UPLSAPO40XS : For a good balance between field of view and resolution
Magnification: 40X, NA: 1.25 (silicone oil immersion), W.D.: 0.3 mm,
cover glass thickness: 0.13 – 0.19 mm, operating temperature: 23 – 37 °C

UPLSAPO60XS2: For 3D observations with superior resolution
Magnification: 60X, NA: 1.30 (silicone oil immersion), W.D.: 0.3 mm,
cover glass thickness: 0.15 – 0.19 mm, operating temperature: 23 – 37 °C

UPLSAPO100XS: For greater brightness at depth in closely defined regions
Magnification: 100X, NA: 1.35 (silicone oil immersion), W.D.: 0.2 mm, cover glass thickness: 0.13 – 0.19 mm, operating temperature: 23 – 37 °C

PLAPON60XOSC2: Enhance the Reliability of Colocalization Analysis with a Low Chromatic Aberration Objective

This oil immersion objective minimizes lateral and axial chromatic aberration in the 405–650 nm spectrum. Colocalization images are acquired reliably and images are measured with superior positional accuracy. The objective also compensates for chromatic aberration through near infrared up to 850 nm, making it the ideal choice for quantitative imaging.

Low Chromatic Aberration Objective
Magnification: 60X NA: 1.4 (oil immersion)
W.D.: 0.12 mm
Chromatic aberration compensation range: 405 – 650 nm
Optical data provided for each objective.

Performance Comparison of the PLAPON60XOSC2 and the UPLSAPO60XO

Reduce Spherical Aberration

The correction collar adjusts the lens position of objectives to correct the spherical aberration caused by refractive index mismatch, resulting in the improvement of image quality, such as resolution, brightness and contrast. The correction collar is especially necessary for objectives with high NA when they are used for super resolution imaging, because they are greatly affected by spherical aberration. The remote correction collar unit is useful for easy adjustment and improvement of the image quality, and operable on all UIS2 objectives which have a correction collar.

Choose the Frame That Suits Your Application

Inverted microscope

  • Suitable for observing cells cultured in a vessel.
  • The Z-drift compensator enables time-lapse observations that remain in focus.
  • Maintain the environmental conditions of cultured cells by adding a stage-top or full enclosure incubator.

Upright microscope (configured for imaging)

  • Optimized for fixed tissue and glass slide specimens.
  • Motorized nosepiece precisely maintains focus position.
  • Motorized 7-position nosepiece and condenser enable automated transitions from low to high magnification.

Upright microscope (configured for electrophysiology)

  • Ample space around the objectives enables patch-clamp devices to be installed.
  • Add additional space by lowering the stage position for experiments that require large sample handling.
  • Swing and slider nosepieces are available so objectives can be easily changed without interfering with the patch-clamp set-up.

Intuitive Software

Customizable and saveable layouts make it easy to tailor the interface to your workflow and experiment needs, from basic to complex.

 

Layout

Start by selecting your preferred display with specific tools for basic to complex acquisition.

Acquisition Condition

Reload settings that were ideal for your last experiment to provide consistency.

Acquisition

Activate basic to complex acquisitions with live ratio, intensity modulated display, quantitative region of interest (ROI) graphing or spectral unmixing display, and data backup for added security.

Viewer

Review data as it is generated. Generate 3D and 4D views and animations to explore and share data in depth.

Analysis

Extract data from images using online or offline processing. Analytical tools include Olympus super resolution technology (FV-OSR) and powerful cellSens software with features such as deconvolution, filtering, count and measure, and one-click macros.

 

BXWI

BXWI

Physiology Patch System

Physiology Patch System BX51WI (BX61WI)

BX51WI는 전기생리학 연구를 위해 태어난 특수 시스템 현미경입니다. BX51WI는 775nm와 990nm의 IR영역에서 수침렌즈를 통해한 이미지 구현이 가능하며, patch clamping 장비를 안정하게 장착 할 수 있습니다.
수침렌즈의 working distance는 patch 장비가 샘플에 접근하기 쉬운 각도와 거리로 제작 되어 있으므로 불편함 없이 실험을 진행할 수 있습니다.
또한 높은 해상력을 제공하므로 깨끗하고 선명한 이미지를 얻을 수 있습니다.

BX61WI는 BX51WI의 특징을 그대로 가져가면서 0.01µm 단위로 조절가능한 Z-축 모터가 내장이 되어 있습니다. 이 Z-축 모터는 컴퓨터나 리모콘을 이용하여 조절 하실 수 있습니다.
또한 BX61WI는 Olympus FV300/1000 confocal systems과 조합이 가능 합니다.

  • IR-DIC를 이용 brain slice를 관찰 할 수도 있으므로 뛰어난 작업환경을 제공 합니다.
  • 효율성을 최대로 살린 디자인은 특수한 렌즈와 집광기 그리고 탄탄한 광학계를 통해 실현 되었습니다.
  • 고정된 제물대, patch clamp 안정성을 위한 horizontal arm과 nosepiece focus. BX51WI는 Burleigh, Sutter, Narishige, Luigs, Neumann등의 장비와 쉽게 조합이 가능합니다.

  • 수침렌즈는 표면이 resin 코팅을 되어 있으며, 2-3.3mm의 작업 공간과 32-44°의 각도로의 pipette 접근이 쉽습니다.

  • 새로운 NA 0.95 WD 2.0mm의 XLUMPFL20x W/IR 렌즈는 샘플로의 접근 공간을 최대한 살려줍니다. Double Port Magnification Changer와 조합하면 렌즈 변환 없이 다양한 배율을 관찰 할 수 있습니다.
  • Long Working Distance Condenser : WI용 condenser는 0.8 NA, 샘플과의 거리 6mm의 스펙을 가지고 있습니다. 1position 또는 1/4 λ 회전이 가능한 5 position condenser를 장착할 수 있습니다.
  • WI 전용 condenser(0.8NA, WD 6mm)에 360°회전이 가능한 slit aperture를 이용하면 저렴한 비용으로 고대비의 이미지를 구현할 수 있습니다.
  • IR 광로 : IR filter는 연구자의 요구에 맞게 보정되었으며 특수 편광 장치를 사용함으로써 990nm의 파장도 사용이 가능합니다.
  • Macro fluorescence capability: Super-efficient large field fluorescence for voltage sensitive dye/membrane potential imaging with the low power 4x/NA 0.28 PLFL or 2x/NA 0.14 objectives
  • Double Port Magnification Changer : Dual port는 두 종류의 파장을 분리하여 얻도록 되어 있습니다. 즉, IR-DIC이미지와 일반형광이미지를 동시에 관찰할 수 있습니다. 장착된 magnification slider를 이용하면 렌즈 교환 없이 낮은 배율과 높은 배율의 이미지를 관찰할 수 있습니다.

Physiology Patch System BX51WI (BX61WI)

 

BX51WI 많은 다른 형태의 patch clamp 장비를 장착하여 사용하실 수 있습니다. (Burleigh, Narishige, Sutter, Luigs Neumann, Newport, 기타)

  • Burleigh Gibraltar Platform에 장착되어 있는 Burleigh Gibraltar Patch Clamp Workstation과 PCS 5000 piezo manipulator series를 BX51WI에 장착하면 2 x 2 slice에 접근이 가능한 patch clamp workstation을 만들 수 있습니다.
  • Olympus Ultrasonic Micromanipulator : 3축 ultrasonic manipulator는 25,000mm의 이동 영역을 가지며 미동 및 조동나사의 정확한 제어가 가능합니다. 전진, 후진 속도를 각각의 축에서 조절 할 수 있습니다 : 0.1mm 정확도로 전체의 영역을 옮겨 다닐 수 있습니다.


고정형 제물대와 초점 조절 nosepiece는 BX51WI에 일체화 되어 있어 patch clamping에 요구되는 안정성을 더해 줍니다.

  • 새로운 Long Working Distance XLUMPFL20x W/IR 렌즈는 NA 0.95 WD 2.0mm으로 최대의 작업 용이성을 제공해 줍니다. Double Port Magnification Changer와 조합하여 렌즈 변환 없이 저배율, 고배율관찰이 가능 해 졌습니다.
  • 개선된 앞쪽 조절 판은 부드러운 조작을 할 수 있도록 제작 되었습니다.

  • 현미경의 앞쪽에 조작 패널있기 때문에 초점 조절과 필터교환을 보다 편하게 할 수 있습니다. 또한 Senarmont DIC 액세서리를 사용하시면 manipulator와 샘플에 손이 닿지 못하기때문에 오염에 따른 실험적 오류를 방지할 수 있습니다.
  • 새로운 Arm Height Raising Kit은 제물대와 렌즈의 공간이 90mm이상이므로 쥐와 같은 동물을 올려놓고 관찰을 할 수 있습니다.
  • 새로운 swing&slide nosepiece는 렌즈변환 도중 공기방울 유입을 막아 주며 swing-only 또는 slide-only nosepiece 또한 사용가능 합니다. 모든 nosepiece 충격과 진동을 최소화 시키도록 하도록 디자인 되어 있습니다.
  • 2x, 4x Macro 형광 렌즈는 낮은 배율의 형광 관찰이 가능합니다. 수침보호 cap을 이용하면 perfusion media에 의한 수차현상을 방지 하실 수 있습니다.

 

MVX10

MVX10

Macro View System

MVX10

제품 소개
C-elegans, Zebrafish, drosophila, embryo, mouse 등의 형광 실험을 저 배율에서 수행하는 고객에게 최적화 된 장비입니다.

  • 재생산, 개발 용도
  • gene, protein 등의 기능 분석

MVX10 : 제품명

  • M : (Macro)
  • V : (View)
  • X : (Olympus Optics)
  • 10 : (Zoom ratio)

제품 특징

  • 가장 밝은 Fluorescence Macro Microscope
  • 고품질의 이미지에 중점을 두어 개발된 제품

시료의 물리적 조작이 주업무일 때 = SZX series
–Injection 작업을 위한 스테레오 이미지가 중점이 됨

물리적 조작 보다는 이미지 품질 및 시그널 검출이 중요할 때 = MVX10
–형광의 밝기와 해상력이 주요 강점

Spec.: MVX-ZB10

Zoom body

– Type: single zoom”@”iZoom ratio:10)
– Zoom magnification: 0.63x – 6.3x –Max. NA(1x Ob): 0.25 (Stereo: 0.125)
– AS: Built in
– Body mount: Dovetail (same as SZX)
– Tube mount: Dovetail same as BX
– Objective mount: M65 x 1.5 mm thread
– Nosepiece: Screw method (same as SZX)
– Body length: 211mm
– Zoom click stop: 0.63,0.8,1,1.25,1.6,2,2.5,3.2,4,5,6.3 (possible to release)
– Magnification display: zoom magnification (differ from SZX12 and SZX9)

Spec.: MVX-TTRS

uTilting Trinocular head for MVX
– Tilting and Trinocular design

» FN: 22 »BI angle: 0- 23 degree
» Interpupillary distance: 51 – 76mm
» Optical path: 2 position (BI/photo: 100/0 and 0/100)
» 3D-effect is available by pupil separation mechanism
» Erect Image

– Tube lens
» Tube magnification: 1x (tube lens f= 180mm)
» Tube mount: Dovetail same as BX
» Restriction with regular Trinocular

– TV adaptors
» TV adapter: MVX-TV1xC, ,MVX-TV 0.63xC ( exclusive use)
» No compatibility with UIS2 adaptors

– Internal magnification changer MVX-CA2X
» Detachable into MVX-TTRS

– Eyepiece: Use WHN series
» Diopter scale adjustment: none (with the eyepiece)

Spec.: MVX-RFA

Coaxial fluorescence illuminator
– Filter change: 4 position turret

3 mirror unit position + Blight field position
Mirror units: XL type (See next page)
– FS: Built-in, AS: none
– Slider : open/2filter position

32ND filters pocket
– Lamp house mount: Same as BX system
  Lamp house : 100W Mercury/75W Xenon
– Tube mount: Dovetail same as BX

  Excitation Emission Comment
U-MGFP/XL 460-490 510- Exist product for GFP/Long path
U-MGFPA/XL 460-490 510-550 Exist product for GFP/Band path
U-MCFPHQ/XL 425-445 460-510 New product for CFP/Band path
U-MCFPHQ/XL 460-480 495-540 New product for GFP/Band path
U-MYFPHQ/XL 490-500 515-560 New product for YFP/Band path
U-MRFPHQ/XL 535-555 570-625 New product for DsRED/Band path

Spec.: Objective lens

Spec.: Objective lens

MVX exclusive PF (Per-focal) objectives

Per-focal length: 137mm
Mount: M65 x 1.5 mm thread
End part external diameter: 60mm (Same as SZX)”iwith out MVPLAPO2XC”j
The MVPLAPO2XC equips with optical correction mechanism for live cell in the water
Two place nosepiece available : MVX-2RE

Name WD NA(Mono) NA(Stereo)
MVPLAPO 0.63X 87 0.15 0.078
MVPLAPO 1X 65 0.25 0.125
MVPLAPO 2XC 20 0.50 0.25

 

IX81-ZDC

IX81-ZDC

Living Cell System

IX81-ZDC

ZDC-IMAGE : 장시간의 Time Lapse 실험시 초점흐름 없는 일관된 이미지를 얻게하는 시스템입니다.

연구자들의 요청에 부흥코저 저희 Olympus에서는 장시간 동안 실시되는 Time lapse 실험 동안에도 초점의 흐름 없이 최적화된 결과물을 얻을 수 있게 하기 위한 System을 개발해 왔습니다. 현미경의 각 구성품에 대한 철저한 연구와 많은 개선 사항의 보완에 따라 저희는 ZDC-IMAGE를 소개해 드리고저 합니다. 특별한 작업을 위해 특수하게 고안된 이 진보된 System은 사용하시는 분으로 하여금 몇 시간이 넘는 Time Lapse 실험에서도 각 촬영 순간마다 뛰어나고 정확한 이미지를 얻어낼 수 있게끔 합니다.

  • 초점의 흐름 없는 일관성
  • 신뢰성 있는 실험 결과물
  • 더 많은 Cell을 표현할 수 있는 Image
  • 여기광에 의한 조명 배제
  • Cell의 활성을 유지할 수 있는 능력
  • 언제나 최적화된 Imaging condition

IX81-ZDC : 초점 흐름 보상기능 (Focus drift compensation)의 연구용 전동 도립 현미경.

Time lapse 실험 동안에도 일관된 초점을 잡아낸다.

이 시스템은 Time lapse 실험이 실행되는 동안 각 Image를 얻기 전에 순간적으로 초점을 자동으로 확인합니다. Image상에서 초점을 자동으로 잡는 System들과는 달리 IX81-ZDC는 초점 대상으로서 Glass-Bottom dish를 사용합니다. 이것은 시료의 조건이나 크기에 구애 받지 않는 초점 보상을 가능하게 합니다. 약한 IR laser가 초점 보상을 위해 사용되기에 여기광에 노출된 Cell이 손상되는 위험성이 없습니다.

 

유리표면을 기반으로 한 ZDC의 초점 흐름 보상 원리

1. 관찰 위치를 “Offset”으로 설정
2. 설정된 Time lapse 시간이 흐른 뒤 관찰 지점으로부터 대물렌즈의 초점위치가 흐트러짐
3. Image acquisition을 수행하기 전에 IR-laser가 유리표면을 탐지
4. 초기의 Offset 위치로 되돌려 줌으로서 초점 흐름 보상이 됨. 0.8초안에 모든 과정이 이루어짐

이 역사적인 현미경 모델은 어떤 위치라도 쉽게 초점을 설정할 수 있습니다. 약한 Laser (785nm) 장치가 Tube 렌즈와 대물렌즈 사이의 추가적인 Optical path로 부착되어 대물렌즈와 반사면 사이의 거리를 측정합니다. 보통 이 거리는 Cover glass와 Cell 사이의 경계의 반사율 차이로 측정됩니다. 그러므로 시료의 불필요한 Photobleaching을 야기하지 않습니다.

고정밀의 Motorized stage
Time lapse 실험 동안에도 일관된 초점을 잡아낸다.

이 Motorized stage는 정밀도를 기반으로 사용자가 설정한 위치로 되돌릴 수 있기 때문에 35mm glass bottom dish를 사용하는 Multi-point time-lapse photography를 수행할 수 있습니다. 이는 다양한 Cell을 상대로 하는 작업이나 기대반응을 일으키는 Cell 개체 검출 실험의 효율성을 극대화 시킵니다. Stage는 소프트웨어로 조작되며 부착된 Joystick을 사용하여 부드럽게 이동시킬 수도 있습니다.

Z series를 이용한 Multi-point time-lapse image illustration 5-D(X,Y,Z,T and multi-point) imaging

cell의 높이와 크기에 따라 각 Point별로 Offset위치를 설정할 수 있습니다. 또한 기준이 되는 Offset위치의 위아래로도 여러 장의 Image를 얻어낼 수가 있습니다 : 이러한 경우 동일한 시간 간격마다 각 Point에 대한 동일한 수의 Image를 얻어낼 수 있습니다.

MIU-IBC-IF/I: CO2 incubator

오랜시간 동안에도 cell의 활성을 유지시켜준다.

이 Incubator dish안의 환경은 극도로 정밀하고 안정된 메카니즘을 통하여 37℃의 온도,90%의 습도,5%의 CO2농도(5%의 CO2 bomb사용시)로 유지됩니다. 이를 통하여 Cell의 활성은 2일까지도 유지 될 수 있습니다. *MIU-IBoIF/I은 Motorized stage(H117)와는 연동 되지 않습니다 ; 이 경우 INU-ZIL(CO2 incubator)이 사용됩니다.

열에 의한 변형 방지 구조

열로 기인한 변형에 따른 초점 흐름을 최소화하는 특수 구조로 제작되었기에,Time-Lapse 관찰에 적합합니다.

주입이 가능하다.

상부 발열판의 구멍을 통해 주사기를 이용한 세포 조작 실험이 가능합니다.

깨끗한 투과광 검경

내부에 습기가 차 있더라도 Incubator내부에 응축되지 않습니다. 또한 상부 발열판이 유리로 만들어져 있기에 위상차와 미분간섭 관찰에 아무런 간섭을 주지 않습니다.

DP30BW: 고감도의 Cooled CCD camera

Living cell imaging을 위해 개발된 무진동,고감도의 cooled CCD camera

Peltier 냉각장치를 사용한 DP30BW는 무진동ㆍ무소음의 조작환경을 제공합니다. shutter와 새로운 노이즈 감소기능과 결합되어 미약한 형광 까지 고품질로 잡아낼 수 있습니다.

희미한 형광까지 깨끗하게 관찰할 수 있다.

단색CCD와 고성능의 증폭기가 결합되어 고감도를 실현합니다. Image는 3종류의 감도조절(Normal,NIR-M,NIR-H)을 통해,가시광에서부터 적외선에 이르는 넓은 파장대에 걸쳐 최적화 됩니다(63%~70%사이의 Quantum efficiency조절). NIR-M과 NIR-H설정의 경우 Cy7 형광인자와 같이 관찰하기 어려운 긴 파장의 빛을 관찰할 수 있게 합니다.

새로운 노이즈 제거 기술

DP30BW의 탁월한 노이즈 제거 능력은 진보된 Peltier 냉각기술과 광전자 전송 회로에 의해 얻어집니다. 추가적으로,긴 노출시간 동안 발생하는 노이즈는 Olympus의 독자적인 Background substraction 기능에 의해 제거 됩니다.

냉각팬이 없는 Peltier cooling system은 조작의 안정성을 더해준다.

팬이 없는 냉각장치를 도입한 DP30BW는 Camera의 진동(또는 관련된 노이즈)로 부터 안전한 조작 환경을 제공합니다.

Shutter

Shutter는 time-lapse 실험에서 매우 중요한 역할을 합니다. 이 장치는 투과/반사 조명장치와 현미경본체 사이에 위치하며,시료의 fade-out현상을 최소화 시키는 것도 software를 사용한 조작이 가능합니다. 사용자의 목적에 따라 IX2-SHA 또는 Uniblitz shutter를 사용할 수 있습니다.

Motorized shutter/ IX2-SHA

투과광 또는 여기광의 광로에 설치할 수 있습니다.

UNIBLITZ shutter

투과광 또는 여기광의 광로에 설치할 수 있습니다.

MetaMorpph Imaging System: Image 획득 및 처리 소프트웨어 ZDC-Image Control

MetaMorpph Imaging System은 Software와 Hardware를 다재다능하고 강력하게 결합시킴으로써 Digital CCD camera로부터 영상을 얻고 분석하는 일련의 과정을 자동화 시킬 수 있습니다. 이 소프트웨어는 Microscope, Filter wheel, Shutter, Cooled CCD camera, Video camera, Monochromator, Focus motor와 Piezo electric focus device,Motorized stage, Digital & serial input/output,그리고 Robotic device들을 포함한 광범위한 기기들에 대해 최고의 조작성을 제공합니다.

Multi-dimensional image acquisition

이 소프트웨어는 Time-lapse 실험의 Photographing작업에 대해 최고의 편의성을 제공합니다. Time Lapse, multiple stage position 그리고 Z Position들을 Function 메뉴에서 독립적으로 선택할 수 있기에 이를 이용한 어떠한 조합의 Image acquisition도 가능하게 합니다.

Multi-dimensional data review

이 기능은 Data를 하드디스크에 저장하고 모니터상에 표현하는 것에 효율성을 부여합니다. Two-Dimensional data(X, Y), Focus plane data(Z), Wavelength data(λ), Time data(T) 그리고 Stage position data(P)들을 선택에 따라 다양한 조합으로 표현 할 수 있습니다.

ZDC operation menu

Offset과 자동 초점 셋팅을 각 지점별로 설정할 수 있습니다.


 

FV10i

FV10i

Confocal System

FV10i

Fluoview FV10i는 세계 최초의 올인원 박스 타입 컨포칼 이미징 시스템입니다. 친근하고 효율적인 사용 구조는 연구자의 소중한 시간을 지켜드릴 것 입니다. 디지털 카메라가 ‘포토그래피’의 컨셉을 바꾸어 놓은 것과 같이 올림푸스 FV10i는 ‘컨포칼 레이저 주사 현미경’의 컨셉을 바꾸어 놓을 것 입니다.

별도의 암막 장치가 필요 없습니다 : 박스 타입의 구성은 완벽한 암실 효과를 제공합니다.

스캐닝 장치 : 사용자가 선택한 형광 시약에 따라 모든 설정을 자동으로 맞춰 줍니다.

현미경 기능 : 광학 줌이 더해진 전용 렌즈를 사용하여 100배에서 6000배 까지의 확대가 가능합니다.

항 진동 장치 : 시스템 자체에 진동 및 흔들림을 잡아 주는 기능이 있어 일반 실험대 위에 설치하셔도 됩니다.

레이저 장치 : 보다 안정적이고 긴 수명을 가지는 다이오드 레이저로 구성되어 있습니다.

FV10i-W / 라이브셀 이미징을 위한 구성

  • 항온항습기능을 바탕으로 라이브셀 이미징을 구현
  • 중앙 급수 장치가 습도 유지 및 수침 렌즈를 자동으로 관리
  • 슬라이드에서 부 터 배양접시 모두 사용 가능합니다
  • 전동식 재물대가 기본 장착되어 Multi Area TimeLapse Imaging이 가능

FV10i-O/ 유침렌즈를 바탕으로한 이미지 중심

  • 1.35의 N.A 값을 가지는 60배 고배율 렌즈
  • 고 배율, 고 품질 이미징에 특화된 구

 

FV1000

FV1000

Confocal System

FV1000

Next generation live cell imaging system

Olympus의 새 모델 FluoView FV1000은 living cell 관찰을 위해 설계 된 새로운 imaging system입니다. Living cell의 민감한 변화에 정확하고 빠르게 대처하는 동시에 높은 해상력을 제공해 주고 얻고자하는 영상을 신속하게 촬영할 수 있습니다.

Brighter, Faster, More precise

1. High-sensitivity

Olympus만의 Ion deposition 기술을 이용한 다중 코팅 필터를 장착, 높은 감도를 가질 수 있도록 새롭게 디자인 되었으며 이러한 디자인은 낮은 여기 파장에서도 정확한 영상을 얻을 수 있기 때문에 살아있는 세포의 손상을 최소화 시켜줍니다.

2. High-speed

16 frames/sec의 빠른 촬영 속도를 제공 합니다. 따라서 Calcium imaging 실험에서 calcium wave 현상까지 잡아낼 수 있습니다.

3. High-precision

Grating dispersion spectral filter가 두 개의 형광 채널에 기본 장착이 되어 있습니다. 이를 이용한 spectrum scanning 기능을 사용하면 최소 2nm의 파형 차이를 분리 할 수 있기 때문에 우리가 원하는 파장만 얻을 수 있으며 기존의 optical filter 형광 채널에서는 분리할 수 없는 파장끼리의 간섭을 Un-mix할 수 있습니다. (ex, FITC와 Rhodamine 간섭) 또한, 세계 최초로 laser feed back mechanism을 채택하여 laser의 강도를 안정하게 제어하므로서 cell의 damage를 최소화하며 time lapse 실험의 정확한 결과 도출을 도와줍니다.

4. Laser light stimulation

Secondary stimulation unit을 장착하면 photo-activation과 imaging acquisition의 동시 작업이 가능합니다.

Intuitive operation makes experiments easy to design, easy to execute

Intuitive software, Spectral un-mixing for complete assurance.

FV1000 spectral system은 고해상의 spectrum detection 방식을 이용, 1nm씩 신속 정확 하게 형광파장을 분리 하며 중첩되는 파장을 확실하게 분리 하는 기능을 제공합니다. Olympus 만의 개선된 Laser Diode를 FV1000에 장착하여 보다 넓은 범위의 형광시약을 관찰 할 수 있게 해줍니다. FV1000의 분석 능력은 confocal Laser scanning microscopes 중에 최상에 속하며 고감도 & 빠른 영상 처리 속도 & 높은 정확성을 제공합니다.

High-speed, high-precision detection with time-lapse experiments.

레이져 강도를 정확히 제어하기 위해, FV1000은 세계최초로 Laser feedback mechanism을 채택하게 되었습니다. 이러한 기술로, Laser의 강도를 정확하게 monitoring을 하여 time-lapse 실험 동안 안정성을 제공 해 줄 수 있습니다. living cell의 time-lapse 실험을 위해time series controller를 장착, 보다 정확하고 보다 신뢰 할 수 있는 data를 마이크로 세컨드 단위로 제공합니다.

Intuitive on ? line observation of desired region as a 2D or 3D image

360도 자유전환이 가능한 volume rendering 기능은 원하는 상을 얻을 수 있도록 해줍니다. 이러한 이점을 이용하여 3차원 영상을 쉽고 자유롭게 관찰할 수 있습니다. 새로운 2차원과 3차원의 전환 기술을 통해 3차원의 영상을 만들 수 있습니다. 이렇게 구현된 3차원 영상을 분석하여 원하는 부분을 2차원으로 관찰 또는 저장이 가능하게 되었습니다.

Simultaneous laser light stimulation and imaging

SIM scanner는 동시에 2개의 스캐닝 유닛을 이용하여 이미지를 얻는 세계 최초의 dual scanner system 입니다. 2개의 독립적인 레이저 빔을 통해 2개의 광원을 동시에 제공합니다. 이중 하나의 레이저는 FV1000의 main scanner에서 confocal 영상 관찰과 기록에 사용되며 나머지 하나는 FV1000에 보조 scanner로 부착된 SIM scanner로서 샘플을 자극하는데 사용 됩니다. 레이저로 자극시킨 즉시 (또는 자극시키는 동안) 발생되는 세포의 반응을 기록할 수 있는 유일한 system 입니다. 따라서 Photoactivation, photoconversion, uncaging, FLIP, FRAP, laser ablation 등의 새로운 실험을 제대로 수행할 수 있습니다.


 

BX51-Bio

BX51

연구용 정립 현미경

BX51의 효율적이고 견고한 본체는 직관적 인터페이스와 결합되어 사용하기 쉽고 편합니다.
새로운 광학계인 Olympus Infinity Corrected Optical System (UIS2 – universal infinity system)은 넓은 파장의 형광과 깨끗한 DIC (Nomarski)이미지를 함께 구현 할 수 있으며 견고하고 안정적인 Y-shape 본체를 기본으로 다양한 액세서리와 렌즈를 장착할 수 있습니다.
견고한 본체는 유저가 필요로하는 액세서리가 무겁더라도 흔들림 없이 장착 가능하게합니다.

  • 밝은 12V/100W halogen 광원은 모든 관찰법에 이상적입니다.
  • 본체에는 두 개의 neutral density filters (ND6, ND25)와 한 개의 daylight balancing filter가 기본으로 장착되어있습니다. 그리고 한 개의 빈 슬롯이 여분으로 남아있어서 다른 필터를 추가하실 수도 있습니다.
  • 프리셋 스위치는 최적의 색온도를 자동으로 설정해줍니다. 이는 사진촬영 시 자연스런 색상을 담아내도록 해줍니다.
  • BX51의 Y-shape 본체 양쪽 모두 포커스 조절 나사를 가지고 있기에 사용자의 편의성이 극대화됩니다.
  • 모듈화 된 디자인과 무한광학계 시스템은 다른 광학 액세서리들의 사용을 용이하게합니다.
  • 22mm 넓은 Field영역은 이미지 관찰 시간을 단축시켜 줍니다. (옵션사항으로 superwide trinocular와 26.5mm Field영역의 대안렌즈를 이용하실 수 있습니다.)
  • 새롭게 구성된 UIS2 광학계는 보다 밝고/정확하고/고대비의 이미지를 구현 할 수 있습니다.
  • Dry 또는 Oil top렌즈를 사용하여 1.25X에서 100X 대물렌즈를 사용할 수 있으며, Brightfield, Darkfield, Phase Contrast, DIC, polarization, 그리고 fluorescence등의 다양한 관찰이 가능 합니다.

유연성 있는 형태의 시스템

  • UIS2 optic system은 어떠한 액세서리를 조합하더라도 이미지 배율 및 품질에 영향을 끼치지 않습니다.
  • 다양한 비디오 장비 및 카메라 장비가 장착 가능하며, BX-URA2 또는 BX-RFA과 같은 형광 장비도 장착할 수 있습니다.
  • 투과/반사 조명을 제공하는 100W 할로겐 램프와 형광실험을 위한 100W 수은램프, 75W의 제논 램프를 사용 하실 수 있습니다.

Modularity & Versatility Meet Growing Research Needs

BX51의 모듈화 디자인은 연구자들의 요구에 부흥코저 개발되었습니다. 이 디자인은 High-end research에 필요한 구성품 장착을 용이하게합니다. 새로운 설계의 6-position cube turret, 7-position nosepiece, 8-position universal condenser와 새로운 수은/제논 광원 장치, 3 종류의 DIC 파트 등이 준비되어 있습니다.

모든 구성품목은 – 제물대, 대안렌즈, 광원장치 등 – 연구자의 목적에 맞게 구성하여 다양한 현미경을 주문/제작할 수 있습니다. UIS2 광학계가 적용되어 기본 이미지 손상없이 다른 액세서리 장비를 쉽게 장착 하실 수 있습니다. Brightfield, Darkfield, Fluorescence 그리고 Nomarski DIC관찰과 같이 다양한 관찰 방법을 렌즈 교환 없이 사용하실 수 있습니다. (U Plan Apochromat 또는 U Plan Fluorite 렌즈).


Economic Comfort

6-position 형광 터렛은 원하는 형광 Dye에 맞는 필터를 장착 하실 수 있습니다. 형광 셔터, 광원 조절, 필터 슬롯 변환을 사용자가 쉽게 조절 할 수 있도록 배치하였습니다.


Advanced Fluorescence Technology Doubles Brightness

물리/온도변화에 안정한 형광장치를 이용하여 다양한 형광실험을 할 수 있습니다. 형광램프장치에는 새롭게 개발된 색수차 보정 렌즈가 장착되어 기존 제품보다 2배 밝은 이미지가 구현됩니다. 또한 액세서리인 Excitation balancer를 장착하면 multi-label된 형광 샘플로부터 더욱 깨끗한 이미지를 얻을 수 있습니다.


Optimized DIC Capability Increases Resolution & Contrast

새로운 DIC (Nomarski) unit은 샘플과 배율에 구애받지 않는 해상력을 제공합니다. Standard/Contrast/Resolution의 unit이 있습니다. Standard는 일반적인 샘플에 사용, High contrast prism과 High resolution prism은 주로 관찰하시는 샘플 두께에 맞추어 선택하시면 됩니다.


 

Chamber System

Chamber System

최근의 연구는 살아있는 세포내의 변화를 실시간 녹화를 통해 관찰 하는 추세로 바뀌어 가고 있습니다. 이러한 영상을 얻기 위해서는 현미경에서 이미지를 관찰하면서 기존의 CO2 Chamber와 같이 온도, 습도, pH를 유지하여야 합니다. 이러한 새로운 변화에 맞추어 올림푸스 현미경에서 실시간으로 이미지를 얻으실 수 있는 Incubator system을 택산상역에서 제공해 드립니다.

1) Temperature – 37℃
   Function (chemical reaction) of the cell means high
   dependent to the temperature.

2) Humidity- 100% Prevent the medium from dry out

3) pH – Neutral Essential for the medium of the pH
        condition (CO2 Control)


TOKAI HIT

라이브셀을 위해 Tokai Hit는 life Science 연구를 위한 Live Cell system을 발명하게 되었습니다.
INU series는 스테이지 위에 올려 놓고 세포를 기르면서 관찰 할 수 있어 현미경 위에서 모든 관찰이 가능 하도록 제작된 시스템입니다. 따라서 짧은 시간, 장시간 세포의 영상기록을 할 수 있게 되었습니다.

Tokai Hit는 독특한 방식의 Clear Glass를 이용하면 정확한 온도조절이 가능하며 DIC(미분간섭), PH(위상차) 등의 모든 관찰법의 사용시 이미지의 틀어짐 없이 편리하게 사용하도록 제작되었습니다. 또한 Thermo-plate를 이용하시면 더욱 다양한 샘플의 관찰이 가능 하실 수 있습니다.

이러한 제품들은 병리학, 생명과학분야 및 다른 여러 분야에서도 관찰 하실 수 있습니다.

Tokai Hit 홈페이지 바로가기 -> http://www.tokaihit.com/english/top/index.html

Product line

Upright: BX Series: MATS-U55S

Inverted: IX Series: MATS-U55R30

CKX Series: MATS-CK2, CK2-30, CKTS, CKTSW

Stereo: MATS-SZX, MATS-OZ

Multi Use: MATS-U4020WF

 

 


Live Cell Instrument

살아있는 생물의 기능적 이해를 위해서 세포간, 단일분자간의 상호작용의 분명한 이해를 하는 것이 중요합니다. 최근의 생물분자, 세포 영상 기술의 사용으로 연구자들은 분자 및 세포간의 연구에 집중하여 상호작용의 이해에 노력하고 있습니다. 이러한 연구들은 장시간의 세포의 관찰, 실시간의 분자간, 세포간의 변화, 칼슘의 변화 단백질의 변화 등의 관찰을 통해 이해할 수 있습니다. 이러한 실험을 위해서 Live Cell Instruments (LCI)는 정량, 정성분석 현미경을 위한 환경제어시스템을 현미경위에서 구성할 수 있도록 제품을 제조 및 디자인 해오고 있습니다. LCI의 다양한 제품을 통해 원하시는 실험을 진행하실 수 있습니다.

LCI 홈페이지 바로가기 -> www.chamlide.com

Product line

Chamlide TC (Incubator system for various type chambers)
Chamlide WP (Incubator system for various commercial well-plates)
Chamlide IC (Incubator system for 35mm dish type chamber or dishes)
FC-5 (Automatic CO2/Air-mixer)
FC-7 (Automatic O2/CO2/N2 mixer)
IHS-101 (Fluidic inline heater)
Heating Plate

 


 

BX45-Bio

BX45

연구용 정립 현미경

BX45는 인체공학 저중심 설계의 현미경으로서 장시간 검경으로 인한 사용자의 피로도를 최소화한 제품입니다.

Tilting-telescoping observation tube를 장착 하시면 사용자에 맞는 눈높이를 조절이 가능합니다. 이러한 인체공학 설계는 수많은 샘플을 검경/처리하는 의학분야 실험실에서 그 효과가 최대화됩니다.

인체공학적 디자인(효율성 및 편리성)

  • 독특한 저중심의 제물대, 미동/조동 초점조절나사를 가진 BX45현미경 본체는 Köhler illumination의 3-position 콘덴서를 내장 하고 있으며 앞쪽에서 조작이 가능하여 더욱 편리합니다.
  • 작업공간이 12.8cm로 설계된 BX45의 제물대는 일반 현미경 보다 8cm가 낮습니다. 따라서 최소한의 움직임으로 쉽게 샘플을 변환할 수 있습니다.
  • Y-모양의 본체는 작으면서도 견고하고 안정적입니다.
  • 5-position nosepiece에 간이 편광 슬라이더를 삽입 할 수 있습니다.

유연성 있는 형태의 시스템

  • BX45는 UIS2 광학계가 사용되어 보다 밝고, 깨끗하고, 높은 대조의 이미지를 얻으실 수 있습니다.
  • 6V/30W할로겐 광원은 photo-preset 버튼을 이용하여 일정하고 좋은 색온도의 빛이 나오도록 조절할 수 있습니다.
  • Brightfield, Darkfield, 위상차, 단순편광관찰법과 같은 다양한 관찰법을 사용할 수 있습니다.

Motorized Nosepiece for the Ultimate in Economic Comfort

  • BX45A 현미경은 2-position 전동타입 nosepiece를 장착, 반복적인 대물렌즈 변환 수작업을 없앴습니다. 대물렌즈는 handswitch 또는 footswitch를 이용하여 쉽고 편안하게 변환 하실 수 있습니다.